lp板成像信息必须在多久处理

① ip板各层结构及作用

IP板由外层,氟卤化钡层,聚酯仿毕巧支持层,防散射层(黑色)组成。线对分辨率不低于5 lp/mm。CR成像原理及其技术流程方式(1)CR基本原理 CR的基本原理是将透过人体的X射线记录...系统的核心部件IP板在读出子系统中机械移动损伤合并IP的备键荧光体不均匀分布造成的结构噪声，会产生大的信噪比，从而影响影像的质量。
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② 宠物店CR是什么意思

CR(Computed Radlography)也称为间接数字化X线成像技术，主要原理是利用存储荧光体成像。它链态困采用磷光体结晶构成的成像板，即IP板吸收X线信息，感光形成潜影，再经过扫描转化咸数字化信号进入计算机系统进行图像处理。lP板外观像1块普通的增感屏，由基板和磷光体材料组成，外加一层棚念保护，再用暗盒装载保护，可以像普通X线暗盒一样拿去拍片。lP板在X线曝光后将X线的图像信息存储在晶体中，再把lP板送到读卡机，读出X线图像信息，送入计算机系统。图像信息经过读出并在显示器上显示后，存储在1P板上的信息自动消闭裤失，成像板又可以再重复使用。优点： (1)CR的曝光剂量与常规的X线摄影相比要小， (2)摄影条件要求比胶片低，几乎没有“废片”， ( 3)采用CR时，X线设备不用经过大的改变，其拍片过程与原有的X线胶片摄影没有什么变化， (4)图像后处理功能，可提高影像诊断的准确性及范围，(5)连锁医院可以共同使用一台CR。

③ 关于医学影像成像原理的文章！

《医学影像成像原理》名词解释
第一章
1．X 线摄影（radiography）：是X 线通过人体不同组织、器官结构的衰减
作用，产生人体医疗情报信息传递给屏-片系统，再通过显定影处理，最终以X
线平片影像方式表现出来的技术。
2．X 线计算机体层成像（computed tomography，CT）：经过准直器的X
线束穿透人体被检测层面；经人体薄层内组织、器官衰减后射出的带有人体信息
的X 线束到达检测器，检测器将含有被检体层面信息X 线转变为相应的电信号；
通过对电信号放大，A/D 转换器变为数字信号，送给计算机系统处理；计算机按
照设计好的方法进行图像重建和处理，得到人体被检测层面上组织、器官衰减系
数（¦）分布，并以灰度方式显示人体这一层面上组织、器官的图像。
3．磁共振成像（magnetic resonance imaging，MRI）：通过对静磁场（B0）
中的人体施加某种特定频率的射频脉冲电磁波，使人体组织中的氢质子（1H）受
到激励而发生磁共振现象，当RF 脉冲中止后，1H 在弛豫过程中发射出射频信号
（MR 信号），被接收线圈接收，利用梯度磁场进行空间定位，最后进行图像重
建而成像的。
4．计算机X 线摄影（computed radiography，CR）：是使用可记录并由激
光读出X 线影像信息的成像板（IP）作为载体，经X 线曝光及信息读出处理，
形成数字式平片影像。
5．棚旅启数字X 线摄影链如（digital radiography，DR）：指在具有图像处理功能的计
算机控制下，采用一维或二维的X 线探测器直接把X 线影像信息转化为数字信
号的技术。
6．影像板（imaging plate，IP）：是CR 系统中作为采集（记录）影像信息
的接收器（代替传统X 线胶片），可以重复使用，但没有显示影像的功能。
7．平板探测器（flat panel detector，镇敏FPD）：数字X 线摄影中用来代替屏-

④ 海康威视怎么添加lP通道

海康威视添加lP通道的具体步骤如下：

1. 在录像机登录的界面，点击鼠标右键，然后选择主菜单选项；

   

(4)lp板成像信息必须在多久处理扩展阅读：

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⑤ 杆状病毒-昆虫细胞蛋白表达服务案例—钟鼎生物

一、实验设计 

按照客户的预期，期望通过杆状病毒-昆虫细胞蛋白表达系统以胞外分泌的形式获得目的蛋白，因此我们分析客户提供的Target-Gene序列，整个蛋白序列呈亲水性，自身不带信号肽序列，并且序列本身含有昆虫细胞的稀有密码子，因此我们设计思路为：

1.1、以客户的基因序列翻译的蛋白序列为源模板，通过密码子优化一套最适宜SF9细胞系的基因序列。

1.2、在蛋白序列N端添加GP67信号序列帮助蛋白穿膜分泌表达至胞外，在C端添加6XHis-Tag便于重组蛋白的检测和亲和纯化。

依据上述设计思路，以卖野基因合成的方式构建pFast-bac1-target-gene表达质粒，转化后通过蓝白筛选方法获得重组的Bacmid，经PCR鉴定之后转染sf9细胞，以获得P1代病毒和P2代病毒。侵染200ml小试表达，通过western blot检测蛋白表达情况，确认蛋白表达情况，再通过Ni-resin亲和纯化获得80%以上目的蛋白。

二、试剂和耗材

转染试剂（购自invitrogen公司）；培养基（购自HYclone公司）；抽提试剂盒（购自Axygen公司）；PCR试剂盒（IO-RAD公司)；血清（购自invitrogen公司）；六孔板（购自corning公司）；细胞培养瓶（购自corning公司）；离心管（购自corning公司）；PCR反应管(购自Fisher公司)；Agarose(购自上海基因公司)；DNA胶纯化试剂盒、质粒小提试剂盒(购自AXYGEN公司)；低熔点琼脂糖（购自sigma公司）；中性红（购自碧云天生物公司液前）；其它试剂均为国产分析纯。

三、主要实验仪器

Allegra 21R 台式高速冷冻离心机 (美国BECKMAN公司)，台式高速离心机(德国SORVAL公司)，Biologic LP层析系统、Mini Protean II垂直平板电泳系统、Gel Doc2000成像系统、水平电泳系统(美国BIO-RAD公司)，PTC-200基因扩增仪(美国MJ Research公司)

320-S pH计(美国Mettler Toledo公司)，AR5120电子天平(美国AHOM S公司)，MultiTemp III 恒温水浴锅、Hofer ΜV-25紫外透射仪(美国Amersham Pharmacia公司)，雪花状制冰机(日本SANYO公司)，JY92-2D超声波细胞粉碎机(中国新芝科器研究所)，蛋白核酸检测仪（南京大学普阳科学仪器厂），超净工作台(中国苏净集团)，NANODROP2000（美国Thermo公司）

四、蛋白性质分析

4.1 客户提供原始基因序列

GTGGGGTGCT******NNNNNNNNNNNNNN---------涉及客户研究内容，不予显示----NNNNNNNNNNNNNNN*******CTTCTCCCTT

4.2 编码的蛋白序列如下（理论分子量41.18KD，理论等电闹配清点PI6.73）

GCSVDFSK******NNNNNNNNNNNNNN---------涉及客户研究内容，不予显示----NNNNNNNNNNNNNNN*******TAGSTDHMDHFSL

4.3 稀有密码子序列分析如下图所示（红色：使用频率低于10% 灰色：使用频率低于20%，绿色为正常频率密码子）

4.4 蛋白序列跨膜及亲疏水性分析

4.5 信号肽预测

综上所述：

1、蛋白理论分子量为 41KD，属于正常分子量范围，较适宜表达。

2、通过对基因密码子使用频率的分析，如果以293细胞为表达宿主，基因序列上使用频率低于20%的密码子X个，使用频率低于10%的密码子X个，优化后通过基因合成方式获得目的基因。

3、通过对蛋白的跨膜结构和亲疏水性分析，蛋白整体呈亲水性，但从473AA之后，蛋白存在典型的跨膜结构，建议去除后表达以提高成功率。

4、目的蛋白自身无信号肽，添加GP67信号肽便于蛋白分泌表达。为了纯化方便，考虑在C端添加His标签。

五、实验方法及实验结果

5.1 pFast-bac1-target-gene表达质粒构建

采用基于PAS(PCR-based Accurate Synthesis)的方法合成target-gene基因，双酶切连接至pFast-bac1载体的BamH I和Hind III之间；将获得的重组质粒转入TOP10克隆菌株，挑取阳性克隆子测序，测序结果拼接如下所示，单划线区为目的基因基因区域。紫色区域为酶切位点，黄色区域为GP67信号肽，绿色区域为6XHis标签；

g c c a c c A T G T T A C T C G T C A A C C A G A G C C A C C A A G G G T T T A A C A A G G A A C A C A C A T C C A A A A T G G T T T C A G C T A T C G T G CT T T A T G T T C T T C T T G C C G C G G C A G C T C A T T C T G C A T T C G C G A G A T T G G C T T G T A A G G A A G A T T A C A G A T A T G C C * * * * * * N N N N N N N ---略--- N N N N N N N * * * * * A T C A T C A C C A T C A C C A T C A C T A A a a g c t t

5.2 使用Chromas软件查看测序峰图文件，截取部分序列示例如下：

5.3 pFast-bac1-XXX质粒酶切图与载体构建示意图如下所示：

5.4 重组杆状病毒表达载体（Bacmid，杆粒）的构建

5.4.1 杆粒菌株转化

DH10Bac E.coli 感受态细胞冰上解冻；(2)将200ng的pFastBac1-gene转移载体缓慢加入感受态细胞中，轻轻混匀；(3)冰上放置30min，然后42℃热击90s；(4)迅速冰上静止5min； (5)向EP管里加入900 μl S.O.C.培养基；(6)37℃，225 rpm震荡摇菌4h；(7)取100μl菌液涂于含有50 mg/ml 卡那霉素，7 mg/ml 庆大霉素，10 mg/ml 四环素，100 mg/ml x-gal,and 40 mg/ml IPTG的LB平板；(8)37℃，倒置培养48h。

5.4.2 重组Bacmid质粒的鉴定

挑取3个白色单克隆菌落接种分别接种于5ml含有50 mg/ml卡那霉素，7 mg/ml 庆大霉素，10 mg/ml 四环素，摇菌，菌液PCR初步筛选阳性克隆菌。小量抽取质粒，PCR验证杆粒正确性，因杆粒大小>135Kb，酶切方式很难进行验证，故采用PCR进行验证，理论上，若目的基因成功转座至Bacmid中，那扩增产物的大小应为（2300bp+目的基因长度）

5.5转染及收获病毒

5.5.1 sf9细胞的培养

sf9细胞培养使用SF 900Ⅱ培养基培养，一般每3天分瓶传代一次。处于对数生长期细胞且细胞活力大于95%的sf9 细胞用于转染实验。

5.5.2 Sf9细胞冻存方法：

细胞培养至对数生长期，活力超过90%; 计数，使得储存浓度为1×107 /ml至2×107 /ml; 准备所需量的储存培养液，加DMSO至10%和FBS至30%，预冷培养液保存于4℃; 离心悬浮细胞或单层细胞 100×g，5min，用预冷的冻存液悬浮至所需密度; 混匀，分装至冻存管; 将冻存管放入填有脱脂棉的泡沫盒，-80℃放置1天；移入液氮罐中保存。

5.5.3 Bacmid转染sf9细胞

(1)在六孔板中接种9×105个细胞/2ml/孔。其中培养基Grace’s medium中含有青霉素50U/ml，链霉素50ug/ml，10％FBS；

(2) 27℃培养1h，使细胞贴壁; 

(3) 在这期间制备Bacmid与Cellfectin Reagent复合物：

A. 用100ul不完全Grace’s medium（不含双抗、FBS）稀释1ug Bacmid（约5ul）; 

B. 在使用前将Cellfectin Reagent倒置5~10次，使其充分混匀，取6ul Cellfectin Reagent用100ul不完全Grace’s medium（不含双抗、FBS）稀释; 

C. 将上述两种稀释液合并（总体积约210ul），轻轻混匀，室温孵育15~45min; 

(4) 在制备Bacmid与Cellfectin Reagent复合物期间，将六孔板中的培养基吸掉，用2ml不完全Grace’s medium（不含双抗、FBS）洗涤一次，去掉培养基; 

(5) 在含有210ul的复合物的管内加入800ul的不完全Graces medium（不含双抗、FBS），轻轻混匀，加到每个孔中; 

(6) 将六孔板内的细胞孵育5h，27℃；

(7) 去掉复合物混合液，然后在每个孔中加2ml完全培养基（SF900含双抗、10％FBS）；

(8) 在27℃湿度培养箱中孵育72h或着直到细胞出现病毒感染迹象。上清和沉淀需要分别制备样品，待后期western blot表达鉴定使用。

5.5.4 P1病毒液的收集

当细胞出现感染迹象时，将细胞上清转移至15ml离心管中，1000rpm离心5min以去除细胞及大的碎片，可用蛋白结合率低的0.2um的滤膜过滤，滴度损失小于10%；将含病毒的上清液转移到另一个无菌带盖的EP管中（一般，P1的滴度在10^6pfu/ml左右）, 将得到的病毒液体避光置于4℃冰箱（短期）。若长期保存，进行1ml分装，避光储存于-80℃。

5.5.5 P2病毒扩增及收获

原代病毒滴度(P1)较低，介于1×106~1×107，扩增后滴度为1×107~1×108。 50ml摇瓶中加入适量的P1病毒。扩增病毒时可用下列公式进行计算：

MOI(Multiplicity of infection)在0.01~0.1之间, 

接种量 （ml）:desired MOI (phf/ml) ×(total number of cells) tlter of viral inoculum (puf/ml) 

感染细胞48 h收集的病毒扩增的将近100倍，超过48h 收集的病毒质量较低。每种病毒的收集时间都有一定的差别，如在72h收集，但是随着细胞的裂解，病毒的增殖活力会受损。

5.5.6 病毒滴度检测

六孔板中细胞120万/孔，静置培养1h，病毒梯度稀释101 102 103 104 105 106 107 108 ，去掉六孔板中的上清，取106、107、108三个滴度病毒加入到六孔板中，平行对照2组，孵育1h，配置空斑培养基，每孔加入2mL空斑培养基；第四天加入中性红染色液；7-10天计数空斑数，算病毒滴度。

5.6 重组蛋白表达纯化

f9细胞以2×106/ml瓶接种于500ml细胞培养瓶中；待细胞生长至对数期，接P2代病毒感染sf9细胞；48~72h内收集细胞及上清，用于重组蛋白表达的检测。

1、依此条件方法放大培养。4℃ 10000g离心20 min，取上清；

2. 利用低压层析系统，上清液以0.5 ml/min流速上样至Ni-IDA Binding-Buffer预平衡的Ni-IDA -Sepharose CL-6B亲和层析柱；

3. 用Ni-IDA Binding-Buffer以0.5 ml/min流速冲洗，至流出液OD280值到达基线； 

4. 用Ni-IDA Washing-Buffer(20 mM Tris-HCl，20 mM咪唑，0.15 M NaCl，pH8.0)以1 ml/min流速冲洗，至流出液OD280值到达基线；

5. 用Ni-IDA Elution-Buffer(20 mM Tris-HCl，250 mM咪唑，0.15 M NaCl，pH8.0)以1 ml/min流速洗脱目的蛋白，收集流出液；

6.将上述收集的蛋白溶液加入透析袋中，使用PBS（PH7.4）进行透析过夜；

7. 进行10% SDS-PAGE分析。

5.7 Western Blot检测

1. 样品上样0.01ug。

2. 上样完毕后，聚丙烯酰胺凝胶先90V跑完积层胶，再将电压升至200V直到电泳结束。

3. 电泳结束后，取下凝胶进行转膜，恒压100V转膜，约为1.5小时。

4. 电转结束后，取下膜后先用PBS洗涤4次，每次5分钟。然后置于5%脱脂奶粉封闭液中封闭37℃ 1小时。

5. 用封闭液稀释一抗，膜在一抗稀释液中37℃反应1小时。

6. 洗膜4次，每次5 分钟；用含5%牛奶的封闭液稀释二抗。膜在二抗中37℃反应1小时。

7. 洗膜ECL显影。

六. 实验结果及分析

6.1 质粒鉴定结果

6.1.1 质粒浓度

6.1.2 PCR鉴定结果

说明：

目的基因2600bp，使用pUC/M13引物扩增产物理论大小为4900bp，实验结果与预期一致。

6.2 P2代病毒蛋白表达鉴定

6.3 病毒滴度检测，采用病毒空斑实验方法检测病毒滴度

说明：

P2代病毒感染sf9细胞，通过检测细胞上清和细胞裂解液发现：目的蛋白大部分存在上清中，正常分泌至胞外。

说明：

通过6孔板病毒空斑实验法检测病毒低毒，可以确认我们提供的病毒低毒达到107pfu/ml。

6.4 通过Ni-IDA-Resin亲和纯化目的蛋白，获得纯度约85%的目的蛋白

说明：

通过Ni-IDA-resin收集目的蛋白，经过浓缩处理后使用SDS-PAGE检测，得到了85%以上的目的蛋白。

说明：

通过SEC-HPLC进一步纯化，获得单一峰的目的重组蛋白，HPLC检测纯度在95%以上。

七. 发货清单

序号类型名称规格常数

1克隆质粒PMD18-target gene2-4ug2

2克隆菌株PMD18-target gene in DH5 α1ml1

3表达菌株PFast-Bac1-target2-4ug2

4杆粒bacmidBacmid-target in TOP101ml1

5P2代病毒MT 107pfu/ml1ml5

6重组蛋白MT protein 纯度>85%，浓度 0.5mg/ml1ml3

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⑥ .IP板在第一次激发后多久读出最好

24小时。
IP板由外层，氟卤化钡层，聚酯厅裂神支持层，防散射层（黑色）组成。线对分辨率不低于5 lp/mm。CR成像原理及其技术流程方式 CR基本原理 CR的基本原理是将透过人体的X射源拿线记录系统的核心部件IP板在读出子系统中机械移动损伤合并IP的荧光体不均匀分布造成扮亏的结构噪声，会产生大的信噪比，从而影响影像的质量。

⑦ IP板成像时其核心转换作用的是

IP板州腔桥成像时其核心转换作用的是负责接收圆慧X线,并进行信息转换，IP板成像的原理是将透过人体的X射线记录，IP板在读出子系统中机械移动损伤合并IP的册猛荧光体不均匀分布造成的结构噪声，会产生大的信噪比，从而影响影像的质量。

⑧ 数字成像CR中IP板中HR是啥板

数字成像CR中:
CR（Computed Radiography）计算机放射摄影。它以成像板IP（Imaging plate）为影像载体来替代传统的X线胶片，采用与常规X线摄影一致的投照技术，在X线对成像板曝光的同时记录下X线影像信息，接过信息的读取与处理后，即可获得数字化的X线影像信号。

CR的构成主要包括两大部分：成像板与信息读出装置。成像板是X线影像的接受体，准确的说它是一个影像信息的采集与信息形成的转换部件。其外观和结构形式如同X线摄影用的增感屏，是由保护层、成像层、支持层和背衬层复合而成的一块薄板。成像层中含有微量二价陏离子的氟卤化钡晶体，是记录影像的核心物资，该晶体内的化合物经过X线照射后可将接受到的X线模拟影像以潜影的形式储存在晶体内。一般来说，这种潜影信息在IP中的留存时间可达8h 以上。当需要解读潜影信息时，可用激光束扫描成像板激发储存在具体内的潜影能量，使之转换成荧光输出。
信息读出装置的作用时将成像板中储存的潜影信息解读出来。它由激光器、光扫描器、光电倍增管、放大器、A/D转换器、影像处理单元和输出接口等部分组成。在IP被装入信息读出装置入口后，激光器发出的精细激光束经过机械移动光扫描器的放射，逐行扫描在欲被解读潜影信息的IP成像板上。于激光束扫描的同时，IP不断被驱动系统向前推进，源肆携于是在既定时间内激光束可将IP完整扫描一遍。激光所照射之处，IP上的晶体被强光激发，长生“光致发光”现象，有蓝色荧光出现，荧光亮度的强弱与该点潜影信息密度为线形关系。该荧光被沿着激光扫描线设置的高效光雹念导器采集，并导入光电倍增管，由此转化为相对应的电信号。在送入电路系统经过A/D（模拟/数字）信号变换，即可被用于数字图像处理，输出给影像显示、储存雹伏或传输通讯系统。

⑨ 微电阻率成像数据处理

由测量信息映射为井壁微电阻率图像需经过下列处理步骤。

（一）预处理

1.自动增益和电流校正

被测地层电阻率动态范围变化大，要使测量电极电流的动态范围变化相应的大，需通过自动增益控制和改变供电电流而实现。

2.失效电极检测及补偿

通过对每个电极电流在选择的处理窗口段上的电流分布直方图分析，去掉那些电极电流不随地层变化的电极信息，利用有效相邻电极相应测点处的测量值的插值对失效电极的测量值进行填补。

3.速度校正和电极方位定位

第一步应用三分量加速度计测量信息将阵列电扣电流时间域测量信息映射为深度域测量信息，即确定每个测点的深度。校正方法完全等同于地层倾角测井速度校正。第二步利用三分量磁通量测量信息和加速度测量信息确定每个电极相对于磁北极的方位角。

还须要对每个电极测量的信息（或曲线）进行“深度对齐”。由于极板上两排钮扣电极间的距离为0.3 in，不做深度对齐时，两排电极显示的异常具有深度偏移。翼板的电极（FMI）与主极板上的电极相距5.7 in，显示的异常更有较大的深度偏移。在猜睁亏对像素处理时必须首先将各电极穗神的测量结果做深度对齐处理，图5-8是深度对齐前后的电极异常显示。

上述处理又称为成像测井的预处理，目标是获得一个电极空间位置正确的图像信息集，重构为井壁图像。

（二）转换成强度图像

为了把每个钮扣电极的电流转换为变强度的图像，在输出的图像中用16种级别的灰度显示，在解释工作站上可用256种色标来显示图像。图像中的每一个“像素”点对应于某一特定范围的电流电平。

通常可用两种方案来选择灰度和色彩级别，即所谓“静态”归一化和“动态”归一化。又称均衡处理。

图5-8 FMI成像深度对齐前后的数据

1）“静态”归一化。即在较大的深度段内（相应于某层段或某一储集层段），对仪器的响应进行归一化，即在一个深度处用特定色彩表示的电阻率，而另一深度处如果色彩相同，即表示该深度处具有同样的电阻率，这种归一化的优点是在较长的井段内通过灰度和颜色的比较来对比电阻率。其不足之处是不能分辨小范围内微电阻率的变化，图5-9（a）是经过“静态”归一化处理的成像图。

图5-9 全井眼地层微电阻率扫描成像图

2）“动态”归一化。即在较短的井段内，选择灰度的深浅和色彩的浓淡来表征电流电平的级别，因此能反映局部范围微电阻率的变化，从而能更精细地研究井壁岩石结构、裂缝等变化。通常其纵向窗长为3ft（1ft=0.3048 m）。这种方法的优点能显示局部范围内微电阻率的相对变化。图5-9（b）是同一井段经过“动态”归一化处理的成像图，与图5-9（a）相比，能更详细地划分井壁地层的变化，尤其在剖早乎面的顶部，清楚地显示地层层理的变化等，而在图5-9（a）中则没有这种显示。

图5-10 井壁成像的显示特征

3）图形显示。当一平面与井身圆柱体垂直相切时，井壁在0°～360°的展开图上呈一直线。当一平面与井身圆柱斜交时，井壁与斜交平面切出一椭圆，在0°～360°的展开图上呈正弦曲线状（图5-10）。平面与井轴相交的角度愈大，则正弦曲线的幅度也愈大，并能从展开图上确定出平面的倾角与走向。根据这种成像显示，就可以确定地层的层理或裂缝的产状等，从而能利用井壁成像研究井壁地层的有关地质特征。

⑩ cr成像过程中用ip板记录影像信息是哪个环节完成的

cr成像过程中用ip板记录影像信息是信息记录环节完成的。CR是计算掘岩机放射摄影。它成像板IP为禅散灶影像载体来替代传统的X线胶片，采用与常规X线摄影一致的投照技术，在X线对成像贺扮板曝光的同时记录下X线影像信息。