⑴ 病理切片一般要用到那一種顯微鏡
癌細胞病理切片在顯微鏡放大幾倍,才能區別出它與正常細胞問題補充：醫院病理用100X.200X.400X這幾個倍數看就行!200X用的會多一些. 哪一種癌
⑵ 試以某一生物樣本做透射電鏡觀察,採用超薄切片法制備樣本,詳細論述處理過程
摘要 在透射電鏡的樣品制備方法中，超薄切片技術是最基本、最常用的制備技術。超薄切片的製作過程基本上和石蠟切片相似，需要經過取材、固定、脫水、浸透、包埋聚合、切片及染色等步驟。
⑶ 負染色電鏡技術要超薄切片么如果不切片用什麼顯微鏡觀察
不用進行超薄切片,只要用電子顯微鏡觀察就可以了.
⑷ 填空題 電鏡超薄切片技術包括( )、( )、( )、( )等四個步驟
電鏡超薄切片技術包括(固定)、( 包埋)、(切片 )、(染色 )等四個步驟
⑸ 石蠟切片技術和超薄切片技術有什麼區別求答案
石蠟切片不僅用於觀察正常細胞組織的形態結構，也是病理學和法醫學等學科用以研究、觀察及判斷細胞組織的形態變化的主要方法，而且也已相當廣泛地用於其他許多學科領域的研究中。教學中，光鏡下觀察切片標本多數是石蠟切片法制備的。活的細胞或組織多為無色透明，各種組織間和細胞內各種結構之間均缺乏反差，在一般光鏡下不易清楚區別出；組織離開機體後很快就會死亡和產生組織腐敗，失去原有正常結構，因此，組織要經固定、石蠟包埋、切片及染色等步驟以免細胞組織死亡，而能清晰辨認其形態結構。
超薄切片技術由於電鏡產生的電子束穿透能力很弱，必須把標本切成厚度小於0.1um以下的薄片才適用，這種薄片稱為超薄切片。常用的超薄切片厚度是50-70nm。在透射電鏡的樣品制備方法中，超薄切片技術是最基本、最常用的制備技術。超薄切片的製作過程基本上和石蠟切片相似，需要經過取材、固定、脫水、浸透、包埋聚合、切片及染色等步驟。
⑹ 超薄切片技術操作過程是什麼
觀察病毒在細胞組織內的狀態，可採取超薄切片技術，將標本用固定液固定後，經過脫水滲透包埋聚合切片等過程，切成薄片然後染色檢鏡。
（1）固定。
常用的固定液主要有鋨酸固定液、醛固定液、高錳酸鹽固定液等。
①鋨酸固定液：這是最常用的固定液，作用迅速，新鮮的鋨酸呈淺黃色，其蒸氣極毒，使用時應在強通風櫃中把裝有鋨酸的安瓿瓶在緩沖液內敲碎。
②醛固定液：植物材料具有厚壁，鋨酸固定液不能很好滲透，有時固定得不好。而醛固定液往往可獲得較好效果，同時還不會破壞酶的活性，可以在切片上進行組織化學測定。常用的有甲醛固定液和戊二醛固定液。
③高錳酸鹽固定液：此種固定液可保持膜的結構，但破壞核糖體並失去酶的活性，對維持TMV粒子在細胞內的排列比戊二醛及鋨酸固定液好。
緩沖液可用1%液體鋨酸和1%過錳酸鉀，也可用磷酸鹽巴比妥-醋酸和二甲胂酸鹽緩沖液。固定可在0～5℃或室溫下進行，供試材料盡可能使用幼嫩的植株，小的根可整個固定，葉片需剪成1～2cm的小塊。葉中的空氣會阻止固定液與大部分細胞接觸，可在真空下把空氣除去。
組織固定後必須徹底沖洗，在進行鋨酸固定前要把多餘的醛用緩沖液沖洗徹底。固定後的組織一定要進行脫水，特別是採取不溶於水的樹脂包埋時，在室溫低於4℃時，丙酮或乙醇脫水效果都很好。
（2）包埋。
包埋用的樹脂可分為四類，即甲基丙烯酸酯、環氧樹脂、聚酯樹脂和各種水溶性化合物。
甲基丙烯酸酯在聚合過程中可能引起組織損傷，在電子束轟擊下，這種介質有升華的趨向，引起細微組織結構的破壞。但甲基丙烯酸酯也有優點，它比環氧樹脂能切出較大的切塊切面，切片也容易染色。
環氧樹脂和聚酯樹脂是保存細胞細微結構的最好包埋材料，目前最常用的環氧樹脂是Epon和Araldite，用它包埋的標本可避免聚合損傷，樹脂切片在電鏡下不升華，可使標本連續觀察，並保存細微結構。
水溶性樹脂劑對一些不希望用有機溶劑脫水，或利用組織切片做酶外處理試驗特別有用，其缺點是不能很好地保持細胞的細微結構。
組織需在包埋介質中充分滲透，常用的有兩種方法：
①環氧樹脂包埋組織的滲透。將丙醇脫水的組織轉到裝有6ml由等量丙酮和環氧樹脂的標本管中，將標本管放在烤箱內由傾斜45°角的馬達帶動的輪上，使其不斷轉動，丙酮由開口的管中蒸發，當丙酮味消失後，將組織在擦鏡紙上吸干，浸入新鮮的樹脂中，再於同一溫度下放4h，再一次吸干組織後，移到裝有新鮮樹脂的膠囊內，將Epon塊放在40℃下，直至完全變硬，並繼續在60℃下凝固12h。
②水溶性樹脂包埋組織的滲透。將組織在戊二醛中固定，在緩沖劑中沖洗1～12h，然後在80%GMA單體和20%的水中脫水20min，再於97%GMA單體和3%的水中繼續脫水20min後，在制備的聚合混合物中滲透過夜。將組織放在烘爐內的明膠膠囊中，注滿聚合混合物除去所有空氣泡，蓋好使其不使與空氣接觸，把膠囊用金屬絲垂直吊起，用長波長的紫外光聚合1～3d即可。
（3）切片。
切片前切去埋塊四周的樹脂，留下高2～3mm的標本正方柱，裝入切片機，使埋塊面的平行邊與刀口平行，把刀慢慢向標本推進，通過切片機上的目鏡系統，把刀推到看不到有間隙之處，每次推進0.5～1.0μm，直到切下切片。切片厚度以能達到浮於液面的切片呈灰色為最好。切片可用醋酸雙氧鈾和檸檬酸鉛進行染色。染色後的切片在0.1N氫氧化鈉中沖洗，然後用水沖洗。
⑺ 電子顯微鏡下觀察不需經超薄切片的樣品時，通常用哪些染色方法
電子染色是利用重金屬鹽對用於電鏡觀察的超薄切片進行染色，以增強標本反差的一種染色方法。重金屬有增強電子散射的作用，不同結構因染色程度不同而具有不同的散射強度，在電鏡下顯示為不同的明暗反差。
光學染色是利用可見光的透射分辨觀察對象的，通過染料著色，將對象的不同組分或組織、性質加以區別。
總的說，前者是為了增大電子束的區分度，後者是為了增加可見光的區分度。
⑻ 石蠟切片技術和超薄切片技術有什麼區別
石蠟切片（paraffin section） 組織學常規製片技術中最為廣泛應用的方法。石蠟切片不僅用於觀察正常細胞組織的形態結構，也是病理學和法醫學等學科用以研究、觀察及判斷細胞組織的形態變化的主要方法，而且也已相當廣泛地用於其他許多學科領域的研究中。教學中，光鏡下觀察切片標本多數是石蠟切片法制備的。活的細胞或組織多為無色透明，各種組織間和細胞內各種結構之間均缺乏反差，在一般光鏡下不易清楚區別出；組織離開機體後很快就會死亡和產生組織腐敗，失去原有正常結構，因此，組織要經固定、石蠟包埋、切片及染色等步驟以免細胞組織死亡，而能清晰辨認其形態結構。
超薄切片技術由於電鏡產生的電子束穿透能力很弱，必須把標本切成厚度小於0.1um以下的薄片才適用，這種薄片稱為超薄切片。常用的超薄切片厚度是50-70nm。在透射電鏡的樣品制備方法中，超薄切片技術是最基本、最常用的制備技術。超薄切片的製作過程基本上和石蠟切片相似，需要經過取材、固定、脫水、浸透、包埋聚合、切片及染色等步驟。
⑼ 什麼是超薄切片技術
由於電鏡產生的電子束穿透能力很弱，必須把標本切成厚度小於0.1um以下的薄片才適用，這種薄片稱為超薄切片。常用的超薄切片厚度是50-70nm。在透射電鏡的樣品制備方法中，超薄切片技術是最基本、最常用的制備技術。超薄切片的製作過程基本上和石蠟切片相似，需要經過取材、固定、脫水、浸透、包埋聚合、切片及染色等步驟。
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