lp板成像信息必須在多久處理

① ip板各層結構及作用

IP板由外層,氟鹵化鋇層,聚酯仿畢巧支持層,防散射層(黑色)組成。線對解析度不低於5 lp/mm。CR成像原理及其技術流程方式(1)CR基本原理 CR的基本原理是將透過人體的X射線記錄...系統的核心部件IP板在讀出子系統中機械移動損傷合並IP的備鍵熒光體不均勻分布造成的結構雜訊，會產生大的信噪比，從而影響影像的質量。
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相關數備問題全部

② 寵物店CR是什麼意思

CR(Computed Radlography)也稱為間接數字化X線成像技術，主要原理是利用存儲熒光體成像。它鏈態困採用磷光體結晶構成的成像板，即IP板吸收X線信息，感光形成潛影，再經過掃描轉化咸數字化信號進入計算機系統進行圖像處理。lP板外觀像1塊普通的增感屏，由基板和磷光體材料組成，外加一層棚念保護，再用暗盒裝載保護，可以像普通X線暗盒一樣拿去拍片。lP板在X線曝光後將X線的圖像信息存儲在晶體中，再把lP板送到讀卡機，讀出X線圖像信息，送入計算機系統。圖像信息經過讀出並在顯示器上顯示後，存儲在1P板上的信息自動消閉褲失，成像板又可以再重復使用。優點： (1)CR的曝光劑量與常規的X線攝影相比要小， (2)攝影條件要求比膠片低，幾乎沒有「廢片」， ( 3)採用CR時，X線設備不用經過大的改變，其拍片過程與原有的X線膠片攝影沒有什麼變化， (4)圖像後處理功能，可提高影像診斷的准確性及范圍，(5)連鎖醫院可以共同使用一台CR。

③ 關於醫學影像成像原理的文章！

《醫學影像成像原理》名詞解釋
第一章
1．X 線攝影（radiography）：是X 線通過人體不同組織、器官結構的衰減
作用，產生人體醫療情報信息傳遞給屏-片系統，再通過顯定影處理，最終以X
線平片影像方式表現出來的技術。
2．X 線計算機體層成像（computed tomography，CT）：經過準直器的X
線束穿透人體被檢測層面；經人體薄層內組織、器官衰減後射出的帶有人體信息
的X 線束到達檢測器，檢測器將含有被檢體層面信息X 線轉變為相應的電信號；
通過對電信號放大，A/D 轉換器變為數字信號，送給計算機系統處理；計算機按
照設計好的方法進行圖像重建和處理，得到人體被檢測層面上組織、器官衰減系
數（¦）分布，並以灰度方式顯示人體這一層面上組織、器官的圖像。
3．磁共振成像（magnetic resonance imaging，MRI）：通過對靜磁場（B0）
中的人體施加某種特定頻率的射頻脈沖電磁波，使人體組織中的氫質子（1H）受
到激勵而發生磁共振現象，當RF 脈沖中止後，1H 在弛豫過程中發射出射頻信號
（MR 信號），被接收線圈接收，利用梯度磁場進行空間定位，最後進行圖像重
建而成像的。
4．計算機X 線攝影（computed radiography，CR）：是使用可記錄並由激
光讀出X 線影像信息的成像板（IP）作為載體，經X 線曝光及信息讀出處理，
形成數字式平片影像。
5．棚旅啟數字X 線攝影鏈如（digital radiography，DR）：指在具有圖像處理功能的計
算機控制下，採用一維或二維的X 線探測器直接把X 線影像信息轉化為數字信
號的技術。
6．影像板（imaging plate，IP）：是CR 系統中作為採集（記錄）影像信息
的接收器（代替傳統X 線膠片），可以重復使用，但沒有顯示影像的功能。
7．平板探測器（flat panel detector，鎮敏FPD）：數字X 線攝影中用來代替屏-

④ 海康威視怎麼添加lP通道

海康威視添加lP通道的具體步驟如下：

1. 在錄像機登錄的界面，點擊滑鼠右鍵，然後選擇主菜單選項；

   

(4)lp板成像信息必須在多久處理擴展閱讀：

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⑤ 桿狀病毒-昆蟲細胞蛋白表達服務案例—鍾鼎生物

一、實驗設計 

按照客戶的預期，期望通過桿狀病毒-昆蟲細胞蛋白表達系統以胞外分泌的形式獲得目的蛋白，因此我們分析客戶提供的Target-Gene序列，整個蛋白序列呈親水性，自身不帶信號肽序列，並且序列本身含有昆蟲細胞的稀有密碼子，因此我們設計思路為：

1.1、以客戶的基因序列翻譯的蛋白序列為源模板，通過密碼子優化一套最適宜SF9細胞系的基因序列。

1.2、在蛋白序列N端添加GP67信號序列幫助蛋白穿膜分泌表達至胞外，在C端添加6XHis-Tag便於重組蛋白的檢測和親和純化。

依據上述設計思路，以賣野基因合成的方式構建pFast-bac1-target-gene表達質粒，轉化後通過藍白篩選方法獲得重組的Bacmid，經PCR鑒定之後轉染sf9細胞，以獲得P1代病毒和P2代病毒。侵染200ml小試表達，通過western blot檢測蛋白表達情況，確認蛋白表達情況，再通過Ni-resin親和純化獲得80%以上目的蛋白。

二、試劑和耗材

轉染試劑（購自invitrogen公司）；培養基（購自HYclone公司）；抽提試劑盒（購自Axygen公司）；PCR試劑盒（IO-RAD公司)；血清（購自invitrogen公司）；六孔板（購自corning公司）；細胞培養瓶（購自corning公司）；離心管（購自corning公司）；PCR反應管(購自Fisher公司)；Agarose(購自上海基因公司)；DNA膠純化試劑盒、質粒小提試劑盒(購自AXYGEN公司)；低熔點瓊脂糖（購自sigma公司）；中性紅（購自碧雲天生物公司液前）；其它試劑均為國產分析純。

三、主要實驗儀器

Allegra 21R 台式高速冷凍離心機 (美國BECKMAN公司)，台式高速離心機(德國SORVAL公司)，Biologic LP層析系統、Mini Protean II垂直平板電泳系統、Gel Doc2000成像系統、水平電泳系統(美國BIO-RAD公司)，PTC-200基因擴增儀(美國MJ Research公司)

320-S pH計(美國Mettler Toledo公司)，AR5120電子天平(美國AHOM S公司)，MultiTemp III 恆溫水浴鍋、Hofer ΜV-25紫外透射儀(美國Amersham Pharmacia公司)，雪花狀製冰機(日本SANYO公司)，JY92-2D超聲波細胞粉碎機(中國新芝科器研究所)，蛋白核酸檢測儀（南京大學普陽科學儀器廠），超凈工作台(中國蘇凈集團)，NANODROP2000（美國Thermo公司）

四、蛋白性質分析

4.1 客戶提供原始基因序列

GTGGGGTGCT******NNNNNNNNNNNNNN---------涉及客戶研究內容，不予顯示----NNNNNNNNNNNNNNN*******CTTCTCCCTT

4.2 編碼的蛋白序列如下（理論分子量41.18KD，理論等電鬧配清點PI6.73）

GCSVDFSK******NNNNNNNNNNNNNN---------涉及客戶研究內容，不予顯示----NNNNNNNNNNNNNNN*******TAGSTDHMDHFSL

4.3 稀有密碼子序列分析如下圖所示（紅色：使用頻率低於10% 灰色：使用頻率低於20%，綠色為正常頻率密碼子）

4.4 蛋白序列跨膜及親疏水性分析

4.5 信號肽預測

綜上所述：

1、蛋白理論分子量為 41KD，屬於正常分子量范圍，較適宜表達。

2、通過對基因密碼子使用頻率的分析，如果以293細胞為表達宿主，基因序列上使用頻率低於20%的密碼子X個，使用頻率低於10%的密碼子X個，優化後通過基因合成方式獲得目的基因。

3、通過對蛋白的跨膜結構和親疏水性分析，蛋白整體呈親水性，但從473AA之後，蛋白存在典型的跨膜結構，建議去除後表達以提高成功率。

4、目的蛋白自身無信號肽，添加GP67信號肽便於蛋白分泌表達。為了純化方便，考慮在C端添加His標簽。

五、實驗方法及實驗結果

5.1 pFast-bac1-target-gene表達質粒構建

採用基於PAS(PCR-based Accurate Synthesis)的方法合成target-gene基因，雙酶切連接至pFast-bac1載體的BamH I和Hind III之間；將獲得的重組質粒轉入TOP10克隆菌株，挑取陽性克隆子測序，測序結果拼接如下所示，單劃線區為目的基因基因區域。紫色區域為酶切位點，黃色區域為GP67信號肽，綠色區域為6XHis標簽；

g c c a c c A T G T T A C T C G T C A A C C A G A G C C A C C A A G G G T T T A A C A A G G A A C A C A C A T C C A A A A T G G T T T C A G C T A T C G T G CT T T A T G T T C T T C T T G C C G C G G C A G C T C A T T C T G C A T T C G C G A G A T T G G C T T G T A A G G A A G A T T A C A G A T A T G C C * * * * * * N N N N N N N ---略--- N N N N N N N * * * * * A T C A T C A C C A T C A C C A T C A C T A A a a g c t t

5.2 使用Chromas軟體查看測序峰圖文件，截取部分序列示例如下：

5.3 pFast-bac1-XXX質粒酶切圖與載體構建示意圖如下所示：

5.4 重組桿狀病毒表達載體（Bacmid，桿粒）的構建

5.4.1 桿粒菌株轉化

DH10Bac E.coli 感受態細胞冰上解凍；(2)將200ng的pFastBac1-gene轉移載體緩慢加入感受態細胞中，輕輕混勻；(3)冰上放置30min，然後42℃熱擊90s；(4)迅速冰上靜止5min； (5)向EP管里加入900 μl S.O.C.培養基；(6)37℃，225 rpm震盪搖菌4h；(7)取100μl菌液塗於含有50 mg/ml 卡那黴素，7 mg/ml 慶大黴素，10 mg/ml 四環素，100 mg/ml x-gal,and 40 mg/ml IPTG的LB平板；(8)37℃，倒置培養48h。

5.4.2 重組Bacmid質粒的鑒定

挑取3個白色單克隆菌落接種分別接種於5ml含有50 mg/ml卡那黴素，7 mg/ml 慶大黴素，10 mg/ml 四環素，搖菌，菌液PCR初步篩選陽性克隆菌。小量抽取質粒，PCR驗證桿粒正確性，因桿粒大小>135Kb，酶切方式很難進行驗證，故採用PCR進行驗證，理論上，若目的基因成功轉座至Bacmid中，那擴增產物的大小應為（2300bp+目的基因長度）

5.5轉染及收獲病毒

5.5.1 sf9細胞的培養

sf9細胞培養使用SF 900Ⅱ培養基培養，一般每3天分瓶傳代一次。處於對數生長期細胞且細胞活力大於95%的sf9 細胞用於轉染實驗。

5.5.2 Sf9細胞凍存方法：

細胞培養至對數生長期，活力超過90%; 計數，使得儲存濃度為1×107 /ml至2×107 /ml; 准備所需量的儲存培養液，加DMSO至10%和FBS至30%，預冷培養液保存於4℃; 離心懸浮細胞或單層細胞 100×g，5min，用預冷的凍存液懸浮至所需密度; 混勻，分裝至凍存管; 將凍存管放入填有脫脂棉的泡沫盒，-80℃放置1天；移入液氮罐中保存。

5.5.3 Bacmid轉染sf9細胞

(1)在六孔板中接種9×105個細胞/2ml/孔。其中培養基Grace』s medium中含有青黴素50U/ml，鏈黴素50ug/ml，10％FBS；

(2) 27℃培養1h，使細胞貼壁; 

(3) 在這期間制備Bacmid與Cellfectin Reagent復合物：

A. 用100ul不完全Grace』s medium（不含雙抗、FBS）稀釋1ug Bacmid（約5ul）; 

B. 在使用前將Cellfectin Reagent倒置5~10次，使其充分混勻，取6ul Cellfectin Reagent用100ul不完全Grace』s medium（不含雙抗、FBS）稀釋; 

C. 將上述兩種稀釋液合並（總體積約210ul），輕輕混勻，室溫孵育15~45min; 

(4) 在制備Bacmid與Cellfectin Reagent復合物期間，將六孔板中的培養基吸掉，用2ml不完全Grace』s medium（不含雙抗、FBS）洗滌一次，去掉培養基; 

(5) 在含有210ul的復合物的管內加入800ul的不完全Graces medium（不含雙抗、FBS），輕輕混勻，加到每個孔中; 

(6) 將六孔板內的細胞孵育5h，27℃；

(7) 去掉復合物混合液，然後在每個孔中加2ml完全培養基（SF900含雙抗、10％FBS）；

(8) 在27℃濕度培養箱中孵育72h或著直到細胞出現病毒感染跡象。上清和沉澱需要分別制備樣品，待後期western blot表達鑒定使用。

5.5.4 P1病毒液的收集

當細胞出現感染跡象時，將細胞上清轉移至15ml離心管中，1000rpm離心5min以去除細胞及大的碎片，可用蛋白結合率低的0.2um的濾膜過濾，滴度損失小於10%；將含病毒的上清液轉移到另一個無菌帶蓋的EP管中（一般，P1的滴度在10^6pfu/ml左右）, 將得到的病毒液體避光置於4℃冰箱（短期）。若長期保存，進行1ml分裝，避光儲存於-80℃。

5.5.5 P2病毒擴增及收獲

原代病毒滴度(P1)較低，介於1×106~1×107，擴增後滴度為1×107~1×108。 50ml搖瓶中加入適量的P1病毒。擴增病毒時可用下列公式進行計算：

MOI(Multiplicity of infection)在0.01~0.1之間, 

接種量 （ml）:desired MOI (phf/ml) ×(total number of cells) tlter of viral inoculum (puf/ml) 

感染細胞48 h收集的病毒擴增的將近100倍，超過48h 收集的病毒質量較低。每種病毒的收集時間都有一定的差別，如在72h收集，但是隨著細胞的裂解，病毒的增殖活力會受損。

5.5.6 病毒滴度檢測

六孔板中細胞120萬/孔，靜置培養1h，病毒梯度稀釋101 102 103 104 105 106 107 108 ，去掉六孔板中的上清，取106、107、108三個滴度病毒加入到六孔板中，平行對照2組，孵育1h，配置空斑培養基，每孔加入2mL空斑培養基；第四天加入中性紅染色液；7-10天計數空斑數，算病毒滴度。

5.6 重組蛋白表達純化

f9細胞以2×106/ml瓶接種於500ml細胞培養瓶中；待細胞生長至對數期，接P2代病毒感染sf9細胞；48~72h內收集細胞及上清，用於重組蛋白表達的檢測。

1、依此條件方法放大培養。4℃ 10000g離心20 min，取上清；

2. 利用低壓層析系統，上清液以0.5 ml/min流速上樣至Ni-IDA Binding-Buffer預平衡的Ni-IDA -Sepharose CL-6B親和層析柱；

3. 用Ni-IDA Binding-Buffer以0.5 ml/min流速沖洗，至流出液OD280值到達基線； 

4. 用Ni-IDA Washing-Buffer(20 mM Tris-HCl，20 mM咪唑，0.15 M NaCl，pH8.0)以1 ml/min流速沖洗，至流出液OD280值到達基線；

5. 用Ni-IDA Elution-Buffer(20 mM Tris-HCl，250 mM咪唑，0.15 M NaCl，pH8.0)以1 ml/min流速洗脫目的蛋白，收集流出液；

6.將上述收集的蛋白溶液加入透析袋中，使用PBS（PH7.4）進行透析過夜；

7. 進行10% SDS-PAGE分析。

5.7 Western Blot檢測

1. 樣品上樣0.01ug。

2. 上樣完畢後，聚丙烯醯胺凝膠先90V跑完積層膠，再將電壓升至200V直到電泳結束。

3. 電泳結束後，取下凝膠進行轉膜，恆壓100V轉膜，約為1.5小時。

4. 電轉結束後，取下膜後先用PBS洗滌4次，每次5分鍾。然後置於5%脫脂奶粉封閉液中封閉37℃ 1小時。

5. 用封閉液稀釋一抗，膜在一抗稀釋液中37℃反應1小時。

6. 洗膜4次，每次5 分鍾；用含5%牛奶的封閉液稀釋二抗。膜在二抗中37℃反應1小時。

7. 洗膜ECL顯影。

六. 實驗結果及分析

6.1 質粒鑒定結果

6.1.1 質粒濃度

6.1.2 PCR鑒定結果

說明：

目的基因2600bp，使用pUC/M13引物擴增產物理論大小為4900bp，實驗結果與預期一致。

6.2 P2代病毒蛋白表達鑒定

6.3 病毒滴度檢測，採用病毒空斑實驗方法檢測病毒滴度

說明：

P2代病毒感染sf9細胞，通過檢測細胞上清和細胞裂解液發現：目的蛋白大部分存在上清中，正常分泌至胞外。

說明：

通過6孔板病毒空斑實驗法檢測病毒低毒，可以確認我們提供的病毒低毒達到107pfu/ml。

6.4 通過Ni-IDA-Resin親和純化目的蛋白，獲得純度約85%的目的蛋白

說明：

通過Ni-IDA-resin收集目的蛋白，經過濃縮處理後使用SDS-PAGE檢測，得到了85%以上的目的蛋白。

說明：

通過SEC-HPLC進一步純化，獲得單一峰的目的重組蛋白，HPLC檢測純度在95%以上。

七. 發貨清單

序號類型名稱規格常數

1克隆質粒PMD18-target gene2-4ug2

2克隆菌株PMD18-target gene in DH5 α1ml1

3表達菌株PFast-Bac1-target2-4ug2

4桿粒bacmidBacmid-target in TOP101ml1

5P2代病毒MT 107pfu/ml1ml5

6重組蛋白MT protein 純度>85%，濃度 0.5mg/ml1ml3

鍾鼎生物官網

⑥ .IP板在第一次激發後多久讀出最好

24小時。
IP板由外層，氟鹵化鋇層，聚酯廳裂神支持層，防散射層（黑色）組成。線對解析度不低於5 lp/mm。CR成像原理及其技術流程方式 CR基本原理 CR的基本原理是將透過人體的X射源拿線記錄系統的核心部件IP板在讀出子系統中機械移動損傷合並IP的熒光體不均勻分布造成扮虧的結構雜訊，會產生大的信噪比，從而影響影像的質量。

⑦ IP板成像時其核心轉換作用的是

IP板州腔橋成像時其核心轉換作用的是負責接收圓慧X線,並進行信息轉換，IP板成像的原理是將透過人體的X射線記錄，IP板在讀出子系統中機械移動損傷合並IP的冊猛熒光體不均勻分布造成的結構雜訊，會產生大的信噪比，從而影響影像的質量。

⑧ 數字成像CR中IP板中HR是啥板

數字成像CR中:
CR（Computed Radiography）計算機放射攝影。它以成像板IP（Imaging plate）為影像載體來替代傳統的X線膠片，採用與常規X線攝影一致的投照技術，在X線對成像板曝光的同時記錄下X線影像信息，接過信息的讀取與處理後，即可獲得數字化的X線影像信號。

CR的構成主要包括兩大部分：成像板與信息讀出裝置。成像板是X線影像的接受體，准確的說它是一個影像信息的採集與信息形成的轉換部件。其外觀和結構形式如同X線攝影用的增感屏，是由保護層、成像層、支持層和背襯層復合而成的一塊薄板。成像層中含有微量二價陏離子的氟鹵化鋇晶體，是記錄影像的核心物資，該晶體內的化合物經過X線照射後可將接受到的X線模擬影像以潛影的形式儲存在晶體內。一般來說，這種潛影信息在IP中的留存時間可達8h 以上。當需要解讀潛影信息時，可用激光束掃描成像板激發儲存在具體內的潛影能量，使之轉換成熒光輸出。
信息讀出裝置的作用時將成像板中儲存的潛影信息解讀出來。它由激光器、光掃描器、光電倍增管、放大器、A/D轉換器、影像處理單元和輸出介面等部分組成。在IP被裝入信息讀出裝置入口後，激光器發出的精細激光束經過機械移動光掃描器的放射，逐行掃描在欲被解讀潛影信息的IP成像板上。於激光束掃描的同時，IP不斷被驅動系統向前推進，源肆攜於是在既定時間內激光束可將IP完整掃描一遍。激光所照射之處，IP上的晶體被強光激發，長生「光致發光」現象，有藍色熒光出現，熒光亮度的強弱與該點潛影信息密度為線形關系。該熒光被沿著激光掃描線設置的高效光雹念導器採集，並導入光電倍增管，由此轉化為相對應的電信號。在送入電路系統經過A/D（模擬/數字）信號變換，即可被用於數字圖像處理，輸出給影像顯示、儲存雹伏或傳輸通訊系統。

⑨ 微電阻率成像數據處理

由測量信息映射為井壁微電阻率圖像需經過下列處理步驟。

（一）預處理

1.自動增益和電流校正

被測地層電阻率動態范圍變化大，要使測量電極電流的動態范圍變化相應的大，需通過自動增益控制和改變供電電流而實現。

2.失效電極檢測及補償

通過對每個電極電流在選擇的處理窗口段上的電流分布直方圖分析，去掉那些電極電流不隨地層變化的電極信息，利用有效相鄰電極相應測點處的測量值的插值對失效電極的測量值進行填補。

3.速度校正和電極方位定位

第一步應用三分量加速度計測量信息將陣列電扣電流時間域測量信息映射為深度域測量信息，即確定每個測點的深度。校正方法完全等同於地層傾角測井速度校正。第二步利用三分量磁通量測量信息和加速度測量信息確定每個電極相對於磁北極的方位角。

還須要對每個電極測量的信息（或曲線）進行「深度對齊」。由於極板上兩排鈕扣電極間的距離為0.3 in，不做深度對齊時，兩排電極顯示的異常具有深度偏移。翼板的電極（FMI）與主極板上的電極相距5.7 in，顯示的異常更有較大的深度偏移。在猜睜虧對像素處理時必須首先將各電極穗神的測量結果做深度對齊處理，圖5-8是深度對齊前後的電極異常顯示。

上述處理又稱為成像測井的預處理，目標是獲得一個電極空間位置正確的圖像信息集，重構為井壁圖像。

（二）轉換成強度圖像

為了把每個鈕扣電極的電流轉換為變強度的圖像，在輸出的圖像中用16種級別的灰度顯示，在解釋工作站上可用256種色標來顯示圖像。圖像中的每一個「像素」點對應於某一特定范圍的電流電平。

通常可用兩種方案來選擇灰度和色彩級別，即所謂「靜態」歸一化和「動態」歸一化。又稱均衡處理。

圖5-8 FMI成像深度對齊前後的數據

1）「靜態」歸一化。即在較大的深度段內（相應於某層段或某一儲集層段），對儀器的響應進行歸一化，即在一個深度處用特定色彩表示的電阻率，而另一深度處如果色彩相同，即表示該深度處具有同樣的電阻率，這種歸一化的優點是在較長的井段內通過灰度和顏色的比較來對比電阻率。其不足之處是不能分辨小范圍內微電阻率的變化，圖5-9（a）是經過「靜態」歸一化處理的成像圖。

圖5-9 全井眼地層微電阻率掃描成像圖

2）「動態」歸一化。即在較短的井段內，選擇灰度的深淺和色彩的濃淡來表徵電流電平的級別，因此能反映局部范圍微電阻率的變化，從而能更精細地研究井壁岩石結構、裂縫等變化。通常其縱向窗長為3ft（1ft=0.3048 m）。這種方法的優點能顯示局部范圍內微電阻率的相對變化。圖5-9（b）是同一井段經過「動態」歸一化處理的成像圖，與圖5-9（a）相比，能更詳細地劃分井壁地層的變化，尤其在剖早乎面的頂部，清楚地顯示地層層理的變化等，而在圖5-9（a）中則沒有這種顯示。

圖5-10 井壁成像的顯示特徵

3）圖形顯示。當一平面與井身圓柱體垂直相切時，井壁在0°～360°的展開圖上呈一直線。當一平面與井身圓柱斜交時，井壁與斜交平面切出一橢圓，在0°～360°的展開圖上呈正弦曲線狀（圖5-10）。平面與井軸相交的角度愈大，則正弦曲線的幅度也愈大，並能從展開圖上確定出平面的傾角與走向。根據這種成像顯示，就可以確定地層的層理或裂縫的產狀等，從而能利用井壁成像研究井壁地層的有關地質特徵。

⑩ cr成像過程中用ip板記錄影像信息是哪個環節完成的

cr成像過程中用ip板記錄影像信息是信息記錄環節完成的。CR是計算掘岩機放射攝影。它成像板IP為禪散灶影像載體來替代傳統的X線膠片，採用與常規X線攝影一致的投照技術，在X線對成像賀扮板曝光的同時記錄下X線影像信息。